En la unidad numero 8 las eucariotas, pueden actuar como reguladores tanto moléculas de RNA como
proteínas. Entre las proteínas, las hay que forman parte de la holoenzima
polimerasa que son los factores de transcripción, otras intervienen en la
remodelación de la cromatina y un tercer grupo se une al DNA para regular la
transcripción, que es el que nos ocupa.ademas que pudimos entender perfectamente como funcionan los
modelos de operon lactosa y operon triptofano el cual de los 2 para mi punto de
vista personal fue el mas confuso, los vimos a ambos en ausencia y presencia de
lactosa y ademas de las diferencias que ocurren en los dos procesos y las rutas
que se toman de acuerdo a la presencia de algunos factores.
martes, 29 de mayo de 2012
8.3 regulación de la transcripción en organismos eucarióticos.
Los tipos de
señales que pueden alterar la transcripción de un gen puede ser de varios
tipos:
**Señales
hormonales: Que interaccionan con un receptor de la
membrana. En la mayoría de los casos, la señal externa provoca la aparición del
segundo mensajero intracelular. La cascada de transducción de señal
subsiguiente produce un regulador de transcripción específico.
**Las señales
nutricionales e iónicas: Suelen darse en eucariotas
unicelulares solamente porque son los únicos a los que va a afectar el medio en
el que están creciendo. La excepción se encuentra en los hepatocitos (es el
regulador de la concentración sanguínea de muchos metabolitos) y las células en
cultivo.
**Contactos
intercelulares: Especialmente durante el desarrollo
embrionario. La sinapsis también pertenece a este grupo.
Proteínas que
modulan la transcripción
En eucariotas,
pueden actuar como reguladores tanto moléculas de RNA como proteínas. Entre las
proteínas, las hay que forman parte de la holoenzima polimerasa que son los
factores de transcripción, otras intervienen en la remodelación de la cromatina
y un tercer grupo se une al DNA para regular la transcripción, que es el que
nos ocupa.
1.- Activadores
transcripcionales
Los activadores
son la proteínas que se van a unir a los elementos distales que son “SDE y
potenciadores” para activar la transcripción. Son específicos de unos pocos
promotores por lo que no estarán en todos los tipos celulares, reconocen
entre 6 y 14 pb en el promotor.
Suelen tener dos
dominios estructurales que su presencia las convierte en proteínas
modulares en las que el dominio de unión y el de activación pueden funcionar
independientemente
Ø Dominio
de unión a DNA: Que consta de 60 a 100 aminoácidos consecutivos.
Ø Dominio de activación de la transcripción: Que consta de 30 a 100 aminoácidos que no tienen por qué ser consecutivos.
Ø Dominio de activación de la transcripción: Que consta de 30 a 100 aminoácidos que no tienen por qué ser consecutivos.
2.-
Coactivadores y correpresores
La acción de un
activador de transcripción o de un represor puede ejercersedirectamente sobre
el complejo basal bien sobre la RNA-polimerasa, alguno de los TFII o los TAFII,
o a través de una molécula intermediaria que puede ser un coactivador o un
correpresor.
Se le llama
coactivador si ayuda a activar la transcripción. Un mismo coactivador puede
recibir señales de distintos activadores para transmitirlos hacia el complejo
del promotor basal.
Y es correpresor
si ayuda a inactivar el promotor. Los correpresores pueden tener actividad
desacetilasa, con lo que hace que el DNA se una con más firmeza a los
nucleosomas, inactivando el promotor porque no puede ser reconocido por los
factores generales de transcripción.
3.- Transactivadores
3.- Transactivadores
Son aquellos que
directamente ejercen su acción interaccionando con el complejo de iniciación
formado en el promtor basal, bien sobre la propia polimerasa o, más
normalmente, sobre una de las TAF o de los TFII, para activar o reprimir
la transcripción, puesto que no son actividades exclulyentes.
3.-
Transactivadores
La fuente de
regulación más potente es al de los elementos distales: Que son los
potenciadores. Su función es la de amplificar la transcripción del promtor
incluso más de 1000 veces. Los
hay específicos del tejido que sólo activan la transcripción
de su gen en determinados tejidos, los hay específicos de la
etapa de desarrollo e inducibles por alguna señal
externa como hormonas, metales pesados, choque térmico, infección viral, etc.
Necesitan la mediación de un coactivador.
Potenciadores
La fuente de
regulación más potente es la de los elementos distales: Que son los
potenciadores. Su función es la de amplificar la transcripción del promtor
incluso más de 1000 veces. Los
hay específicos del tejido que sólo activan la transcripción
de su gen en determinados tejidos, específicos de la
etapa de desarrollo einducibles por alguna señal externa
como hormonas, metales pesados, choque térmico, infección viral, etc. Necesitan
la mediación de un coactivador.
8.4.2 EL OPERÓN TRIPTÓFANO
El operón triptófano es un
sistema de tipo represible, ya que el aminoácido triptófano (Correpresor)
impide la expresión de los genes necesarios para su propia síntesis cuando hay
niveles elevados de triptófano.
Sin embargo, en ausencia de triptófano o a niveles muy bajos se transcriben
los genes del operón . Los elementos del operón son en esencia semejantes a los del operón
lactosa:
- Genes estructurales: existen cinco genes
estructurales en el siguiente orden trpE-trpD-trpC-trpB-trpA.
- Elementos de control: promotor (P) y operador (O).
El promotor y el operador están al lado de los genes estructurales y en el
siguiente orden: P O trpE-trpD-trpC-trpB-trpA. Curiosamente, las enzimas
codificadas por estos cinco genes estructurales actúan en la ruta
metabólica de síntesis del triptófano en el mismo orden en el que se
encuentran los genes en el cromosoma.
- Gen regulador (trpR): codifica para la proteína
reguladora. Este gen se encuentra en otra región del cromosoma bacteriano
aunque no muy lejos del operón.
- Correpresor: triptófano.
:
Elementos del Operón Triptófano
|
Los genes estructurales del operón triptófano se encuentran en el mismo
orden que actúan las productos codificados por ellos en la ruta biosintética
del triptófano
En ausencia de triptófano, o cuando hay muy poco, la proteína reguladora
producto del gen trpR no es capaz de unirse al operador de forma que la ARN-polimerasa puede
unirse a la región promtora y se transcriben los genes del operón triptófano.
En presencia de triptófano, el triptófano se une a la proteína
reguladora o represora cambiando su conformación, de manera que ahora si puede
unirse a la región operadora y como consecuencia la ARN-polimerasa no puede
unirse a la región promotora y no se transcriben los genes estructurales del
operón trp.
Por tanto, la diferencia esencial entre el operón lac (inducible) y el
operón trp (represible), es que en este último el represor del triptófano
solamente es capaz de unirse al operador cuando previamente está unido al trp.
8.2.1 OPERON LACTOSA
Un Operón es grupo de genes estructurales cuya expresión está regulada por los mismos elementos de control (promotor y operador) y genes reguladores.
Los principales elementos que constituyen un operón son los siguientes:
Los genes estructurales: llevan información para
polipéptidos. Los operones bacterianos suelen contener varios genes
estructurales, son poligénicos o policistrónicos.
Hay algunos operones bacterianos
que tienen un solo gene estructural. Los operones eucarióticos suelen contener
un sólo gen estructural siendo monocistrónicos.
El promotor (P): es una región del ADN con una secuencia que
es reconocida por la ARN polimerasa para comenzar la transcripción. Se
encuentra antes de los genes estructurales..
El operador (O): elemento de control que es una región del
ADN con una secuencia que es reconocida por la proteína reguladora. El operador
se sitúa entre la región promotora y los genes estructurales.
El gen regulador (i): secuencia de ADN que codifica
para la proteína reguladora que reconoce la secuencia de la región del operador.
El gen regulador está cerca de los genes estructurales del operón pero no está
inmediatamente al lado.
Proteína reguladora: proteína codificada por el gen
regulador. Está proteína se une a la región del operador.
Inductor: sustrato o compuesto cuya presencia induce la expresión de los
genes.
En ausencia del inductor (la lactosa), la proteína represora
producto del gen i se encuentra unida a la región operadora e
impide la unión de la ARN-polimerasa a la región promotora y, como
consecuencia, no se transcriben los genes estructurales
En presencia del inductor (la lactosa), este se une a la proteína reguladora que cambia su conformación y se suelta de la región operadora dejando acceso libre a la ARN-polimerasa para que se una a la región promotora y se transcriban los genes estructurales. Por consiguiente, la presencia del inductor hace que se expresen los genes estructurales del operón, necesarios para metabolizar la lactosa.
8.2.-REGULACION DE LA TRANSCRICION EN ORGANISMOS PROCARIOTICOS
Cambios en la estructura del DNA
En las bacterias, es necesario
regular la expresión de los genes adaptándola a las necesidades ambientales. Existen
enzimas capaces de introducir cada uno de estos azúcares en la bacteria y
enzimas capaces de romperlos para obtener energía. Esto sería un gran
perdida energética producir
simultáneamente todos los enzimas necesarios para metabolizar los diferentes
azúcares mencionados. sería mucho más factible para la célula producir solamente las enzimas
necesarias en cada momento, es decir, si en el medio en el que vive la bacteria
la principal fuente de carbono es la lactosa, solamente se expresarían los
genes necesarios para metabolizar la lactosa, Por tanto, es esencial que exista
un mecanismo de regulación de la expresión génica, de manera que los genes se
expresen cuando sea necesario.
Superenrollamiento
Para una situación homeostática en la
célula en relación al número de superenrollamientos es necesario mantener con
una regulación contraria los genes “topa” que codifica la topoisomerasa I y
“gyrA” y “gyrB” que determinan las dos subunidades de la DNA-topoisomerasa II.
No se conoce el mecanismo molecular que controla esta regulación. Sí se sabe
que mutantes en las topoisomerasas disminuyen la tasa general de transcripción.
Metilación
La metilación provoca un cambio de
estructura en el apareamiento entre las bases nitrogenadas que puede alterar su
reconocimiento por algunas proteínas.
El más conocido es el de la metilasa dam que
reconoce la secuencia GATC y metila la A.
La mayor parte de los genes cuya expresión
se ve reprimida por la metilación son genes cuya expresión sólo se necesita
durante la replicación (único momento en el que una cadena del DNA está
transitoriamente hemimetilado), permaneciendo reprimidos el resto del ciclo
celular.
Cambios en la interacción entre el DNA y la RNA-polimerasa
Lo provocan aquellos cambios que, sin
alterar ni la estructura del DNA ni la de la RNA-polimerasa, sí que afectan la
interacción entre ambas. Es necesaria la comparecencia de una tercera molécula,
habitualmente una proteína aunque a veces puede ser RNA.
Son tres mecanismos los que pueden
alterar esta interacción:
-Modificación de la interacción entre RNA polimerasa y el promotor debido
a la
existencia de una proteína
reguladora y un efector.
- Secuencias reguladoras a distancia
-Modificación de la terminación: Anti terminación
8.1 NIVELES DE REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA.
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En las bacterias, es necesario regular
la expresión de los genes adaptándola a las necesidades ambientales. Existen
enzimas capaces de introducir cada uno de estos azúcares en la bacteria y
enzimas capaces de romperlos para obtener energía.
Es esencial que exista un mecanismo de
regulación de la expresión génica, de manera que los genes se expresen cuando
sea necesario.
Por tanto, la complejidad de los
organismos emerge de una regulación de la expresión génica cada vez más
elaborada y no de cambios o mutaciones en los genes estructurales o
enzimáticos: la secuencia de las proteínas se conserva demasiado a través de distintas especies, sin cambios
importantes, mientras que los cambios en el orden de los elementos del promotor
o de sus elementos reguladores provocan alteraciones drásticas.
La estrategia eucariota debe ser
distinta puesto que en los organismos pluricelulares donde el medio
intercelular es relativamente constante, el control génico está al servicio de
la especialización celular. Así, nos encontramos con genes que no responden a
cambios fisiológicos y otros que sufren un fuerte control como consecuencia del
desarrollo, de la organización de células en tejidos, y de los tejidos en
organismos completos.
Así, los mamíferos son muy diferentes,
pero sus ORF son parecidas; en cambio, la divergencia de secuencia en las ranas
es muy alta a pesar de que forman un grupo bastante homogéneo.
Las diferentes posibilidades de
regulación de la expresión génica en organismos eucariotas son:
La
genómica indica:
·El número de genes no varía mucho
entre las especies: los vertebrados tienen como mucho el doble de genes que los
invertebrados;
·El número de genes no sirve para
explicar la diversidad evolutiva por mutación o duplicación génica;
·La variabilidad de los genes se debe
a la duplicación de genes en vez de la creación de genes nuevos.
·La complejidad evolutiva se
correlaciona con el aumento de genes reguladores: en las levaduras hay un gen
regulador por cada 20 funcionales, pero en humanos hay más de 3 000 reguladores
para unos 30 000 genes
1._Nivel de cromatina.
La cromatina está constituida por el
DNA enrollado alrededor de una serie de nucleosomas, Además de los cambios
generales que ocurren en las regiones activas o potencialmente activas, ocurren
cambios estructurales en sitios específicos asociados con la iniciación de la
transcripción o con determinadas características estructurales del DNA.
Muchos de los sitios hipersensibles
están relacionados con la expresión génica. Cada gen activo tiene su sitio en
la región del promotor y a veces más de un sitio. La mayoría de los sitios
hipersensibles se encuentran solamente en la cromatina de las células en las
cuales se está expresando el gen asociado. Se asume que un sitio hipersensible
es el resultado de la unión de proteínas reguladoras específicas que excluyen
los nucleosomas. Los factores de transcripción pueden generar sitios
hipersensibles asociados a la transcripción.
2._Nivel transcripcional.
La transcripción de un gen en estado
activo está controlada en la iniciación por la interacción de la RNA polimerasa
con su promotor. En la mayoría de los genes, éste es el punto de control más
importante.
Este podría ser el nivel más común de
regulación. La regulación de la transcripción de un gen específico de tejido es
la base de la diferenciación eucariota, como por ejemplo, las proteínas que
regulan el desarrollo embrionario que no son más que factores de transcripción.
3._Nivel postranscripcional.
A nivel postranscripcional, la
regulación de la expresión de los genes eucariotas se subdivide en:
Splicing diferencial.
Diferentes sitios de poliadenilación.
Estabilidad de los mRNA.
Almacenamiento de los mRNA.
4._Nivel traduccional.
Este nivel de regulación es el menos
conocido. Los mecanismos que lo rigen desempeñan un papel importante en el almacenamiento, ya
que la traducción depende de la liberación de los mRNAs, aún cuando el
almacenamiento sea breve. Tampoco todos los mRNAs que llegan al citoplasma se
traducen en proteínas.
A veces se encuentran mRNAs que dirigen la
síntesis proteica in vitro, aunque sus proteínas correspondientes no se
sintetizan en las células de las cuales se obtuvo el mRNA. La posibilidad de
que un mRNA sea traducido en auténticas proteínas in vitro, demuestra que éste
es capaz de funcionar como molde. De esta manera, su incapacidad de ser
traducido in vivo puede tomarse como evidencia del control traduccional. Debe
haber algunos mecanismos in vivo que eviten la traducción.
5.-Nivel postraduccional.
Las proteínas recién sintetizadas
pueden sufrir modificaciones postraduccionales que son, una manera de controlar
la expresión de los genes en eucariontes. Esta regulación puede ser
cuantitativa o cualitativa.
Se trata de glicosilaciones,
fosforilaciones, acetilaciones, ribosilaciones, etc. Se puede dar el caso de poliproteínas
que sufren cortes. La insulina está formada por dos cadenas polipeptídicas.
Primeramente se sintetiza una cadena de 86 aminoácidos que es la
preproinsulina. Se elimina el péptido señal y queda la proinsulina con 62
aminoácidos. Sucede un plegamiento tridimensional de la proinsulina que está
estabilizado por enlaces disulfuros. después se eliminan 31 aminoácidos
por cortes internos dando la insulina activa.
lunes, 28 de mayo de 2012
metodologia,objetivo
METODOLOGÍA
Los apuntes de la unidad serán anotados según veamos los temas,
tareas ensayos o tareas que se nos
presenten al desarrollo de la unidad basada en la regulación de la expresión génica
OBJETIVO
Se Integraran los conocimientos anteriores con los
mecanismos de regulación genética
Para entender a nivel molecular los procesos
metabólicos.
En esta unidad aprenderemos
la regulación genética y
todos los procesos que afectan la acción de un gen a
nivel de traducción o transcripción, regulando sus productos funcionales.
También conoceremos los niveles de regulación
de la expresión genética. Veremos la regulación de transcripción en organismos
procarióticos y en eucarióticos. Algo mas que estudiaremos también es el Operón
Lactosa : es un operón requerido para el transporte
y metabolismo de la lactosa en la bacteria Escherichia coli, también
en algunas bacterias entéricas que presentan tres genes
estructurales adyacentes, un promotor, un terminador y
un operador lo comprenderemos en su control positivo y
negativo. Otro tipo de operón es el Operón de Triptófano que es un sistema de
tipo represible, ya que el aminoácido triptófano que es correpresor impide la
expresión de los genes necesarios para su propia síntesis cuando hay niveles
elevados de triptófano
miércoles, 9 de mayo de 2012
TAREA
Formas en que se da el ayuste
El splicing de ARN es un proceso post-transcripcional de
maduración del ARN en el cual eliminan fragmentos
secuenciales. Este proceso es común en eucariotas, consiste en eliminar los
intrones del transcrito primario y posteriormente unir los exones; aunque
existen otros tipos de ajuste donde se eliminan exones y/o retienen intrones.
existen diversos métodos de splicing del ARN..
El Spliceosoma es un complejo formado por cinco ribonucleoproteínas
nucleares pequeñas o snRNP (complejo formado por unas diez proteínas más una
pequeña molécula de ARN). El ARN de los snRNP es el encargado de reconocer el
intrón. Spliceosoma mayor
Esta formado por los snRNP U1, U2, U4, U5 y U6. Reconoce
la secuencia consenso GU (Guanina-Uracilo) del extremo 5’ del intrón así como
la secuencia consenso AG del extremo 3’. El 99% de los intrones lo hacen a
través de este mecanismo.
-Complejo E: U1 se une a la secuencia consenso GU del
extremo 5’ del sitio de corte del intrón, junto con las proteínas accesorias
ASF/SF2, U2AF, SF1/BBP.
- Complejo A: U2 se une al sitio de ramificación e hidroliza
ATP. El sitio de ramificación se sitúa a una distancia de 20-40 nucleótidos del
extremo 3’ del intrón y en él se localiza la secuencia consenso CURAY.
- Complejo B1: U5, U4 y U6 trimerizan, y U5 se une al
exón 5’ y U6 a U2.
-Complejo C1: U4 es liberado, U5 se une al sito de
empalme del extremo 3’ del exón, U6 y U2 catalizan la reacción de
transesterificación y el extremo 5’ del intrón es cortado; como resultado se
forma una estructura en lazo característica denominada lariat.
- Complejo C2: el
extremo 3’ del intrón es cortado lo que provoca la liberación del lazo de ARN.
A continuación los exones son ligados, lo que conlleva gasto de ATP. Por
último, el complejo se disocia.
Spliceosoma menor
Es similar al Spliceosoma mayor pero en este los intrones
eliminados son escasos, y presentan diferencias en los sitios de corte y
empalme. También se diferencian en las secuencias consenso reconocidas, que en
este caso son AU y AC para los extremos 3’ y 5’, respectivamente. snRNP U5, el
resto son análogos funcionales denominadas U11 U12 (U2), U4atac (U4) y
U6atac(U6).
Splicing en trans
También se puede denominar transempalme Consiste en el
empalme de exones de dos transcritos primarios distintos, con la formación de
un ARN híbrido.
Autosplicing
Corte y empalme en el que el propio intrón actúa como
catalizador en su eliminación, por lo que no se requiere de proteínas. Cuando
un fragmento de ARN tiene actividad catalítica se le denomina ribozima. Para
que el mecanismo de autosplicing sea preciso se requiere de la hidrólisis de
ATP. Existen dos tipos de intrones que actúan como ribozimas, los intrones del
grupo I y los del grupo II. La similitud en el mecanismo de corte y empalme de
estos intrones y el spliceosoma sugiere que probablemente evolucionaron juntos
aunque también se ha propuesto que el autosplicing surgió durante el mundo de
ARN.
Intrones del grupo I
El grupo OH 3’ de un nucleósido libre de guanina o del
propio intrón o un cofactor (GMP, GDP o GTP) ataca al fosfato del sitio de
corte 5’. Lo que da lugar al corte del intrón por su extremo 5’ y a la
formación del lariat
El grupo OH 3’ del
exón lleva a cabo un ataque nucleofílico en contra el extremo 3’ del intrón, lo que
origina su corte y la liberación de la estructura en lazo.
Intrones del grupo II
El grupo OH 2’ de una adenosina específica del intrón
ataca el sitio de corte 5’, originando la estructura en lazo (lariat).
El grupo OH 3’ del exón lleva a cabo un ataque
nucleofílico contra el extremo 3’ del intrón, lo que origina su corte y la
liberación de la estructura en lazo.
Los exones son unidos.
Splicing de ARNt
Es un mecanismo de corte y empalme poco usual que se
observa en ARNt. El mecanismo involucra diferentes rutas bioquímicas como la
splceosomal y el autosplicing.
ERRORES DE SPLICING
Las mutaciones pueden afectar a los sitios de splicing,
lo que puede influir sobre la síntesis proteica de distintas formas:
1-Pérdida del sitio de splicing: puede originar la
aparición prematura de un codón de stop, la pérdida de un exón o la inclusión
de un intrón.
2- Reducir la
especificidad: puede variar la localización del sitio de splicing, lo que
origina la inserción o deleción de aminoácidos o la pérdida de la pauta de
lectura.
3-Transposición del sitio de splicing: origina la
inserción o deleción de ARN, lo que origina cadenas de ARN más cortas o largas.
Splicing alternativo
Este splicing permite
obtener a partir de un transcrito primario de ARN distintas moléculas de ARN
maduras. Este proceso ocurre principalmente en eucariotas.
.
bibliografia
http://genmolecular.wordpress.com/replicacion-y-transcripcion-del-adn/
laguna.fmedic.unam.mx/~evazquez/.../transcripcion%20eucarionte.ht...
MODIFICACIONES
6.2.2 modificaciones
postranscripcionales del RNA mensajero
Los procesos de maduración son los que llevan a los
transcritos primarios a convertirse en transcritos maduros. Mostrados sobre un
mRNA, los cuales son:
Splicing: Se
trata de un mecanismo muy exacto, pues de no serlo produciría un corrimiento
del marco de lectura en el mensaje transcripto. Los intrones son cortados del
ARNm inmaduro por un sistema específico que reconocen secuencias cortas dentro
de él y que se encuentra cerca de los límites con exones. Estas secuencias son
llamadas "sitio dador" (común en casi en todos los intrones), en el
extremo 5’y "sitio aceptor", en el extremo 3’
Caperuza:
La caperuza o casquete de los mRNA es un 7-metilguanilato
unido al primer nucleótido del RNA por un enlace 5’-5’ trifosfato. Esto hace
que la guanosina añadida se una en sentido opuesto al del resto de la cadena
polinucleotídica*Proteger la molécula frente a la acción de exonucleasas
inespecíficas.
FUNCIONES
-Marcar el hnRNA como sustrato de otras reacciones de
procesamiento en el núcleo.
-Ayudar a los ribosomas a reconocer el mRNA para iniciar
la traducción; se ha visto que la caperuza es reconocida por uno de los
factores de traducción, aunque no es una etapa imprescindible.
-Ayudar al desalojo del promotor en el comienzo de la
elongación, o sea, a la eliminación de los factores de iniciación que no se
necesitan en la elongación. O lo que es lo mismo: intervenir en el paso de
iniciación a elongación
Cola
Poly A: En el extremo 3’, según se mencionó antes, los ARNm
Eucariotas contienen una secuencia de 20 a 200 nucleótidos que poseen como base
nitrogenada a la Adenina. La secuencia Poly A no está codificada en el ADN,
sino que es añadida al ARN después de finalizada la transcripción. La función
de la Cola Poly A es la de aumentar la estabilidad de los ARN m.
En las eucariotas, el proceso se lleva acabo en el
núcleo, y es parecido al de las procariotas, pero posee mayor complejidad.
Diferentes ARNp transcriben diferentes tipos de genes. La ARNpII transcribe los
pre-ARNm, mientras que la ARNpI y ARNpIII transcriben los ARN-ribosomales y
ARNt, respectivamente.
Los ARNs transcritos son modificados posteriormente. El
pre-ARNm, sufre un proceso de maduración que tras cortes y empalmes sucesivos
elimina ciertos segmentos del ADN llamados los intrones para producir el ARNm.
Durante este proceso de maduración se puede dar lugar a diferentes moléculas de
ARN. Es decir un mismo gen o secuencia de ADN, puede dar lugar a diferentes
moléculas de ARNm y por siguiente, producir diferentes proteínas. Otro factor
de regulación propio de las células eucariotas son los conocidos potenciadores que
incrementan demasiado(100 veces) la actividad de transcripción de un gen
Los principales mecanismos de regulación de expresión génica, recaen en el proceso de
transcripción.esto quiere decir que, la célula podrá “elegir” qué genes
transcribe y cuáles no, dependiendo de las necesidades metabólicas en ese
momento. Cada día se postulan más mecanismos por los cuales la transcripción
puede ser regulada, nos dedicaremos al estudio del mecanismo clásico de
regulación: el Modelo del Operón.
El Promotor es el lugar del ADN en el cual se une la ARN
polimerasa para iniciar la transcripción. Los Genes Estructurales son las porciones de ADN que codifican
para la síntesis de las proteínas asociadas metabólicamente.
La transcripción
de los Genes Estructurales depende de la actividad de otro gen denominado Gen
Regulador
El gen Regulador codifica para una proteína que tiene
afinidad para unirse al operador. Siempre que el represor se encuentre unido a
esta proteína, se verá boqueada la unión de la ARN polimerasa al promotor,
inhibiéndose así la transcripción de los Genes estructurales.
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